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PORTADA
(Elaborada por la revista)
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Eficacia del extracto etanólico de Azadirachta en el control de
Spodoptera frugiperda en estadio larvario
Efficacy of ethanolic extract of Azadirachta indica on larvae of Spodoptera
frugiperda
César Gavin Moyano
cgavin@uagraria.edu.ec
https://orcid.org/0000-0003-3083-7066
Universidad Agraria del Ecuador
Milagro – Ecuador
Nuvia Moran Sánchez
nsanchez@uagraria.edu.ec
https://orcid.org/0000-0002-4238-2241
Universidad Agraria del Ecuador
Milagro – Ecuador
Fernando Bermeo Pesantes
fbermeo@uagraria.edu.ec
https://orcid.org/0009-0007-0438-3626
Universidad Agraria del Ecuador
Milagro – Ecuador
Eduardo Jama Aveiga
ejama@uagraria.edu.ec
https://orcid.org/0009-0004-1083-4858
Universidad Agraria del Ecuador
Milagro – Ecuador
Domenica Choez Chavez
domenica.choez.chavez@uagraria.edu.ec
https://orcid.org/0009-0009-2464-1711
Universidad Agraria del Ecuador
Milagro – Ecuador
Artículo recibido: 13/10/2026
Aceptado para publicación: 13/11/2026
Conflictos de Intereses: Ninguno que declarar
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RESUMEN
El extracto etanólico de hojas de Azadirachta indica constituye una alternativa de origen
vegetal con potencial para el manejo de Spodoptera frugiperda. El objetivo de este estudio fue
evaluar la actividad insecticida de diferentes concentraciones del extracto sobre larvas de esta
especie. Para ello, se recolectaron larvas en campo y se preparó el extracto etanólico de neem,
que posteriormente se sometió a un análisis fitoquímico preliminar y a una caracterización
mediante cromatografía líquida de alta resolución con detección ultravioleta (HPLC-UV). La
actividad insecticida se evaluó bajo condiciones controladas mediante tres concentraciones del
extracto (25, 50 y 75 %). Los resultados evidenciaron una mayor mortalidad larvaria con la
concentración del 75 %, que alcanzó el 66,67 % a las 80 horas de exposición. Por su parte, las
concentraciones del 50 y 25 % registraron mortalidades del 24,7 y 11,13 %, respectivamente.
Estos hallazgos sugieren que el extracto etanólico de A. indica presenta actividad insecticida
frente a larvas de S. frugiperda, con una respuesta favorable a la mayor concentración evaluada.
No obstante, se requieren estudios adicionales para determinar su eficacia en condiciones de
campo y establecer su viabilidad como alternativa para el manejo sostenible de esta plaga.
Palabras clave: Azadirachta indica, Spodoptera frugiperda, extracto etanólico,
actividad insecticida, mortalidad larvaria
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ABSTRACT
The ethanolic extract of Azadirachta indica leaves represents a plant-based alternative
with potential for the management of Spodoptera frugiperda. This study aimed to evaluate the
insecticidal activity of different extract concentrations against larvae of this species. Larvae
were collected from the field, and an ethanolic neem extract was prepared and subsequently
subjected to preliminary phytochemical screening and characterization by high-performance
liquid chromatography with ultraviolet detection (HPLC-UV). Insecticidal activity was
assessed under controlled conditions using three extract concentrations (25, 50, and 75%). The
results showed that the 75% concentration produced the highest larval mortality, reaching
66.67% after 80 hours of exposure. In contrast, the 50% and 25% concentrations resulted in
mortality rates of 24.7% and 11.13%, respectively. These findings suggest that the ethanolic
extract of A. indica exhibits insecticidal activity against S. frugiperda larvae, with a greater
response at the highest concentration tested. However, further studies are needed to determine
its effectiveness under field conditions and establish its feasibility as an alternative for the
sustainable management of this pest.
Keywords: Azadirachta indica, Spodoptera frugiperda, ethanolic extract, insecticidal
activity, larval mortality
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INTRODUCCIÓN
La presencia de Spodoptera frugiperda, conocida como gusano cogollero, constituye uno de
los principales desafíos fitosanitarios para la producción de maíz y otros cultivos agrícolas de
importancia económica. Esta especie es altamente polífaga y sus larvas ocasionan daños
principalmente al alimentarse del follaje y del cogollo, lo que puede comprometer el desarrollo
de las plantas y reducir el rendimiento agrícola(Nexticapan-Garcéz et al., 2009). Su amplia
distribución y capacidad de afectar diferentes cultivos han convertido a esta plaga en un
problema relevante para la protección fitosanitaria y la seguridad alimentaria(Shu et al., 2021).
El manejo de S. frugiperda se ha basado, en gran medida, en la aplicación de insecticidas
sintéticos. Sin embargo, la dependencia de estos productos puede favorecer la selección de
poblaciones resistentes y generar efectos adversos sobre organismos no objetivo y el ambiente.
En consecuencia, resulta necesario fortalecer estrategias de manejo integrado de plagas (MIP)
que combinen diferentes métodos de control y reduzcan la dependencia de los insecticidas
convencionales (Kempegowda et al., 2026). En este contexto, los plaguicidas de origen vegetal
representan una alternativa que merece ser investigada por su potencial para complementar las
estrategias de manejo sostenible (FAO, 2018).
Entre las especies vegetales de interés destaca Azadirachta indica, conocida como neem, que
contiene diversos metabolitos secundarios con actividad biológica sobre los insectos. Entre sus
compuestos se encuentra la azadiractina, un limonoide reconocido por sus efectos
antialimentarios y reguladores del crecimiento y desarrollo de diferentes especies de insectos.
Shu et al. (2021) demostraron que la exposición de larvas de S. frugiperda a azadiractina inhibió
su crecimiento y modificó la expresión de genes relacionados con procesos de desintoxicación,
la síntesis de quitina y las rutas hormonales. Estos resultados respaldan el interés por estudiar
los compuestos derivados del neem como posibles herramientas para el manejo de esta plaga
(d’Errico et al., 2023).
La eficacia de los extractos vegetales puede variar según la parte de la planta utilizada, el
solvente de extracción, la composición química y la concentración aplicada. En este sentido,
Hernandez-Trejo et al. (2021) evaluaron la actividad insecticida de compuestos polifenólicos
obtenidos de semillas de neem frente a larvas de S. frugiperda y caracterizaron los componentes
mediante cromatografía líquida de alta resolución acoplada a espectrometría de masas (HPLC-
MS). Su investigación constituye un antecedente relevante sobre el potencial insecticida de los
extractos de neem. No obstante, los resultados obtenidos con semillas no pueden extrapolarse
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directamente a los extractos de hojas, debido a las posibles diferencias en su composición
química y actividad biológica. Por ello, es pertinente evaluar extractos foliares obtenidos con
etanol y determinar su actividad insecticida bajo condiciones experimentales
controladas(Hernandez-Trejo et al., 2021).
La caracterización fitoquímica y cromatográfica permite complementar los bioensayos y
contribuir a la comprensión de la composición del extracto evaluado. En particular, la
cromatografía líquida de alta resolución con detección ultravioleta (HPLC-UV) puede
utilizarse para obtener perfiles cromatográficos y, cuando se dispone de patrones analíticos y
un método validado, identificar y cuantificar determinados compuestos(Forim et al., 2010). La
integración de esta información con la evaluación de la mortalidad larvaria permite estudiar la
actividad insecticida del extracto y explorar su posible relación con los componentes químicos
detectados, siempre que la identificación y cuantificación analíticas lo permitan (De Paula
et al., 2016).
En este contexto, el presente estudio tuvo como objetivo evaluar la actividad insecticida de
diferentes concentraciones del extracto etanólico de hojas de A. indica sobre larvas de S.
frugiperda, mediante un análisis fitoquímico preliminar, la caracterización cromatográfica por
HPLC-UV y la determinación de la mortalidad bajo condiciones controladas. Se planteó como
hipótesis que la concentración del extracto influye en la mortalidad larvaria y que las
concentraciones más elevadas pueden producir una mayor actividad insecticida. Los resultados
de esta investigación contribuirán a generar evidencia sobre el potencial del extracto foliar de
neem como alternativa botánica complementaria para el manejo de S. frugiperda.
METODOLOGÍA
Localización del estudio
La investigación se desarrolló en dos localidades de la provincia del Guayas, Ecuador,
correspondientes al área de recolección del material biológico y al lugar de ejecución de los
ensayos experimentales. Las larvas de S. frugiperda se recolectaron en campos de cultivo de
maíz ubicados en el cantón Simón Bolívar, donde se identificó la presencia de la plaga en su
entorno agrícola natural. La recolección en campo permitió obtener los organismos necesarios
para evaluar la actividad insecticida del extracto vegetal bajo condiciones experimentales
controladas. Los ensayos experimentales y los análisis de laboratorio se llevaron a cabo en el
Laboratorio de Ciencias Ambientales de Universidad Agraria del Ecuador, sede Milagro.
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Recolección y manejo de larvas
Las larvas de S. frugiperda se recolectaron manualmente en campos de cultivo de maíz del
cantón Simón Bolívar, provincia del Guayas, Ecuador, durante los meses de junio y julio de
2025. Para el estudio, se seleccionaron individuos correspondientes al segundo estadio larvario
mediante un procedimiento de muestreo aleatorio, obteniéndose un total de 72 larvas destinadas
a los ensayos experimentales.
La recolección se efectuó durante las primeras horas de la mañana, con el propósito de reducir
la exposición a temperaturas elevadas y minimizar el estrés asociado con la manipulación y el
transporte de los organismos. Una vez recolectadas, las larvas se colocaron en recipientes
plásticos individuales, lo que permitió prevenir el canibalismo y reducir las posibles
interacciones entre individuos durante su traslado. Los recipientes se dispusieron en
contenedores ventilados para favorecer la circulación del aire y mantener condiciones
adecuadas de transporte.
Posteriormente, los especímenes fueron trasladados al Laboratorio de Ciencias Ambientales.
Durante el traslado, se procuró evitar la exposición directa a la radiación solar, las temperaturas
extremas y las condiciones que pudieran comprometer la integridad de las larvas. A su llegada
al laboratorio, los individuos se mantuvieron bajo condiciones controladas hasta su utilización
en los ensayos experimentales, con el fin de favorecer su adaptación al entorno de laboratorio
y reducir la influencia de factores externos sobre la respuesta al tratamiento.
Figura 1. Recolección en campo y traslado de larvas
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Nota: Las larvas fueron recolectadas cuando el cultivo de maíz se encontraba en un estado
fenológico de 30 a 35 días después de la siembra.
Las larvas recolectadas fueron mantenidas en condiciones controladas de laboratorio (27 ± 2
°C, 76 ± 5% de humedad relativa y fotoperiodo de 16:8 h luz: oscuridad) durante 24 h previas
al tratamiento para su aclimatación. Los individuos fueron alojados en recipientes plásticos
individuales y alimentados con hojas frescas y cogollos de maíz, renovados diariamente, con
el fin de mantener condiciones fisiológicas homogéneas y minimizar el estrés previo a los
bioensayos.
Proceso de Secado y extracción etanólica de neem
Secado del material vegetal
Se emplearon 200 g de hojas de Azadirachta indica, las cuales fueron previamente lavadas con
una solución de hipoclorito de sodio al 5% durante 3 min, seguido de un enjuague con agua
destilada para eliminar impurezas y residuos. Posteriormente, el material vegetal fue secado
con papel absorbente y colocado en una estufa a 50 °C durante 24 h. Una vez secas, las hojas
fueron trituradas en un molino hasta obtener un polvo homogéneo.
Extracción Soxhlet
La extracción se realizó utilizando un equipo Soxhlet con un matraz balón de 500 mL. Se
emplearon 20 g de material vegetal seco y 300 mL de etanol grado reactivo (J.T. Baker). La
muestra fue colocada en cartuchos de papel filtro y sometida a extracción continua durante 12
h bajo reflujo. Posteriormente, el extracto obtenido fue concentrado a 65 °C hasta la
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evaporación del solvente, obteniéndose un extracto etanólico crudo de hojas de A. indica
(Hashim et al., 2021).
Determinación de Azadiractina mediante cromatografía de alta resolución con detección
ultravioleta (HPLC UV)
La determinación de azadiractina se realizó mediante cromatografía líquida de alta resolución
con detección ultravioleta (HPLC-UV). El extracto etanólico fue previamente filtrado a través
de membranas de 0,45 µm. El análisis se llevó a cabo utilizando una columna C18 de fase
reversa, empleando como fase móvil una mezcla de agua y acetonitrilo en gradiente. El flujo
se mantuvo constante, y la detección se realizó a 214 nm (De Paula et al., 2016; Hashim et al.,
2021; Kaushik, 2002).
Se preparó una curva de calibración utilizando un estándar de azadiractina de pureza conocida,
disuelto en el mismo solvente que las muestras. La cuantificación se realizó mediante la
comparación del área del pico correspondiente en las muestras con la curva de calibración
obtenida.
Curva de calibración y cálculos de azadiractina
Se prepararon soluciones estándar de azadiractina en un rango de 131.25 a 1050 ppm. Cada
solución fue analizada por HPLC y se registró el área del pico correspondiente. La curva de
calibración se construyó mediante regresión lineal entre la concentración y la respuesta del
detector (Ver tabla 1).
El análisis mostró una alta correlación lineal (R² = 0.999X), dentro del rango evaluado. La
ecuación de calibración obtenida fue, y = mx + b donde y corresponde al área del pico y x a la
concentración de azadiractina (ppm).
Tabla 1. Datos para la construcción de la curva estándar
NIVEL
CONCENTRACIÓN (PPM)
ÁREA DEL PICO
1
1050
1,258,632.5
2
525
625,348.75
3
262.5
298,512.00
4
131.25
155,523.75
Nota: La respuesta del detector (área del pico) es proporcional a la concentración de
azadiractina en el rango de 131.25–1050 ppm.
Fuente: elaboración propia.
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Tamizaje Fitoquímico
Se realizó un tamizaje fitoquímico cualitativo del extracto etanólico (96%) de Azadirachta
indica con el fin de identificar la presencia de metabolitos secundarios. Para ello, se emplearon
pruebas estándar: reactivos de Mayer y Wagner para alcaloides, reacción de Liebermann–
Burchard para triterpenos y esteroides, prueba de espuma para saponinas, cloruro férrico para
fenoles y taninos, y reacción de Shinoda para flavonoides(Kaushik, 2002).
La presencia de los metabolitos se determinó mediante la observación de cambios
característicos de coloración o formación de precipitados, y los resultados se expresaron de
forma semicuantitativa utilizando un sistema de intensidad relativa (+, ++, +++), de acuerdo
con la respuesta observada (Liang et al., 2023).
Evaluación de la Mortalidad
Cálculo de mortalidad, registro de datos y corrección de Abbott
La mortalidad de Spodoptera frugiperda se registró a intervalos de 24 h durante un período
total de 120 h. En cada intervalo, se contabilizó el número de individuos muertos por réplica
experimental (Khanal et al., 2024). El porcentaje de mortalidad se calculó como la proporción
de individuos muertos respecto al total inicial, multiplicado por 100(Piepho et al., 2024).
Cuando se observó mortalidad en el grupo control, los datos fueron corregidos utilizando la
fórmula de Abbott (Abbott, 1925):
Donde %MC es la mortalidad corregida, %MT la mortalidad en el tratamiento y %MCtrl la
mortalidad en el control.
Análisis estadístico
Los datos de mortalidad se expresaron como media ± desviación estándar. Se realizó un análisis
de varianza (ANOVA) de una vía para evaluar diferencias entre tratamientos, previa
verificación de los supuestos de normalidad y homogeneidad de varianzas. Cuando se
detectaron diferencias significativas (p < 0.05), se aplicó la prueba de comparación múltiple de
Tukey. El análisis estadístico se llevó a cabo utilizando SPSS.
RESULTADOS
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Screening fitoquímico
Tabla 2. Tamizaje fitoquímico del extracto etanólico (96%) de Azadirachta indica.
Nomenclatura: presencia (+), ausencia (−).
GRUPO FITOQUÍMICO
PRUEBA
RESULTADO
Triterpenos/Esteroles
Liebermann–Burchard
+
Alcaloides
Mayer
+
Wagner
+
Dragendorff
+
Flavonoides
Shinoda
+
Taninos/Fenoles
Cloruro férrico
+
Saponinas
Prueba de espuma
−
Azúcares reductores
Fehling
−
Aminoácidos
Ninhidrina
−
Nota: El tamizaje fitoquímico se realizó mediante ensayos cualitativos estándar. La presencia
(+) o ausencia (−) de metabolitos se determinó en función de cambios característicos de
coloración o formación de precipitados en cada prueba.
Fuente: elaboración propia.
Figura 2. Pruebas de tamizaje fitoquímico
Nota: Ensayos cualitativos del tamizaje fitoquímico del extracto etanólico (96%) de
Azadirachta indica. Los cambios de coloración observados en los tubos corresponden a
reacciones positivas para metabolitos como alcaloides, flavonoides, fenoles/taninos y
triterpenos/esteroles, en concordancia con los resultados reportados en la Tabla 2.
Fuente: elaboración propia.
Los resultados del tamizaje fitoquímico evidenciaron la presencia de diversos compuestos
bioactivos en el extracto etanólico de Azadirachta indica. La reacción de Liebermann–
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Burchard indicó la presencia de triterpenos/esteroles mediante una coloración verde intensa.
Las pruebas de Dragendorff y Mayer confirmaron la presencia de alcaloides por la formación
de precipitados característicos. Asimismo, la prueba de Shinoda mostró una coloración rojo-
anaranjada, evidenciando la presencia de flavonoides.
Por su parte, la reacción con cloruro férrico produjo coloraciones azul-negras y violáceas,
confirmando la presencia de taninos y compuestos fenólicos. En contraste, las pruebas para
saponinas (espuma), azúcares reductores (Fehling) y aminoácidos (ninhidrina) resultaron
negativas, lo que sugiere la ausencia de estos metabolitos en el extracto analizado.
Concentración de azadiractina
Tabla 3. Concentración total de azadiractina en extracto etanólico de hojas de neem
(Azadirachta indica)
MUEST
RA
LECTURA
ESPECTROFOTOM
ÉTRICA (Y)
CONCENTRA
CIÓN EN
VIAL (MG/L)
FACTO
R DE
DILUCI
ÓN
(ML)
MASA
DE
MUEST
RA
SECA
(G)
CONCENTRA
CIÓN FINAL
(MG/KG)
Extracto
etanólic
o (96%)
de hojas
de neem
24,125.00
207.86
200.00
20.49
2028.50
Nota: La concentración de azadiractina fue determinada mediante análisis espectrofotométrico
y expresada en mg/kg (equivalente a ppm). El cálculo se realizó considerando el factor de
dilución y la masa seca de la muestra vegetal.
Fuente: elaboración propia.
La concentración de azadiractina obtenida (2028,50 ppm) evidencia una eficiencia significativa
del proceso de extracción etanólica aplicado a hojas de neem. Este valor se sitúa dentro del
rango superior reportado para extractos foliares, lo cual sugiere una adecuada liberación del
compuesto bioactivo bajo las condiciones experimentales empleadas.
Tasa de mortalidad por tratamiento
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Figura 3. Dinámica temporal de la mortalidad de Spodoptera frugiperda bajo diferentes
tratamientos con extracto de neem
Nota: La figura muestra que el tratamiento T1 produjo una mortalidad más rápida y alta en
Spodoptera frugiperda, mientras que T2 y T3 presentaron efectos más lentos y menores, y el
control (T4) no generó mortalidad.
Fuente: elaboración propia.
La figura muestra la dinámica temporal de la mortalidad de larvas de Spodoptera frugiperda
bajo cuatro tratamientos (T1–T4) durante un periodo de 120 horas. El tratamiento T1 presenta
una respuesta temprana, con mortalidad observable desde las 40 horas y un máximo alrededor
de las 80 horas, manteniéndose constante posteriormente. El tratamiento T2 evidencia una
respuesta retardada, iniciando mortalidad cerca de las 80–100 horas y alcanzando su máximo
al final del experimento. El tratamiento T3 presenta una respuesta aún más tardía y de menor
magnitud, con incremento progresivo hacia las 120 horas. En contraste, el tratamiento control
(T4) no presenta mortalidad durante todo el periodo experimental.
Este patrón sugiere una relación dependiente de la concentración y/o biodisponibilidad del
compuesto activo, con efectos diferenciales en la cinética de mortalidad.
Eficacia de los tratamientos
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Figura 4. Eficacia (%) de extractos etanólicos de neem sobre Spodoptera frugiperda
determinada mediante la corrección de Abbott
Nota: Eficacia de tres tratamientos (T1–T3) basada en mortalidad corregida, mostrando mayor
efectividad a mayores concentraciones del extracto.
Fuente: elaboración propia.
La figura muestra el porcentaje de eficacia de tres tratamientos (T1, T2 y T3) obtenidos
mediante la corrección de Abbott frente a Spodoptera frugiperda. El tratamiento T1 presenta la
mayor eficacia (66,67%), seguido por T2 (24,47%) y T3 (11,13%). Se observa una disminución
progresiva del rendimiento conforme disminuye la concentración del extracto, evidenciando
una relación dosis-respuesta.
DISCUSIÓN
El uso de etanol como solvente de extracción en el presente estudio resultó adecuado para la
obtención de metabolitos secundarios bioactivos, lo cual concuerda con lo reportado por
Lefebvre, (2021), quien destaca su capacidad para solubilizar compuestos de diversa polaridad.
En este sentido, la detección de alcaloides, flavonoides, fenoles y triterpenos en el extracto
etanólico de Azadirachta indica evidencia la eficiencia de este solvente en la recuperación de
compuestos con potencial biológico(Lefebvre et al., 2021).
Diversos estudios han demostrado que los metabolitos identificados en este trabajo poseen
actividad insecticida significativa. En particular, la azadiractina, un tetranortriterpeno presente
en A. indica, actúa como regulador del crecimiento y antialimentario en insectos, interfiriendo
en procesos hormonales y reduciendo la supervivencia larvaria (Isman, 2020). Asimismo, los
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flavonoides y compuestos fenólicos han sido asociados con efectos antioxidantes y tóxicos en
insectos, afectando su sistema digestivo y metabólico (Pavela & Benelli, 2016).
En relación con los resultados de mortalidad observados en Spodoptera frugiperda, estudios
recientes han reportado que extractos de neem presentan efectos significativos en el control de
esta plaga, especialmente en estadios larvarios. Por ejemplo, Dong-soon, (2023) señala que los
extractos de neem pueden causar inhibición del crecimiento, reducción en la alimentación y
mortalidad progresiva en lepidópteros. Estos efectos están directamente relacionados con la
concentración del extracto, lo cual coincide con los resultados obtenidos en este estudio, donde
se evidenció una mayor mortalidad a concentraciones más elevadas (Dong-soon, 2023).
Por otro lado, la ausencia de saponinas, azúcares reductores y aminoácidos en el extracto
sugiere que la actividad biológica observada está principalmente asociada a compuestos
fenólicos, alcaloides y terpenoides. Esta composición fitoquímica ha sido reportada como
característica de extractos con actividad insecticida selectiva, reduciendo efectos no deseados
sobre organismos no objetivo (Abenaim & Conti, 2023).
Finalmente, el uso de extractos vegetales como el neem se enmarca dentro de estrategias
sostenibles de manejo integrado de plagas (MIP), las cuales buscan reducir la dependencia de
insecticidas sintéticos. En este contexto, los resultados obtenidos respaldan el potencial del
extracto etanólico de A. indica como una alternativa viable y ecológica para el control de S.
frugiperda, contribuyendo al desarrollo de sistemas agrícolas más sostenibles (Tripathi et al.,
2024).
Diversos estudios han demostrado que la concentración de azadiractina varía
considerablemente según la parte de la planta, siendo las semillas la principal fuente de este
limonoide, con concentraciones significativamente mayores que las hojas (Song et al., 2018).
Sin embargo, el valor obtenido en este estudio supera varios reportes promedio para tejido
foliar, lo que podría atribuirse a factores como la eficiencia del solvente etanólico y las
condiciones de extracción.
Asimismo, la variabilidad en el contenido de azadiractina está influenciada por factores
genéticos, ambientales y fisiológicos. Se ha documentado una amplia variación en la
concentración de este metabolito entre diferentes procedencias y condiciones agroclimáticas,
evidenciando que factores como temperatura y humedad influyen significativamente en su
biosíntesis (Gbotolorun et al., 2008). De igual manera, estudios recientes han confirmado la
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existencia de una alta variabilidad genética en germoplasmas de neem, lo que impacta
directamente su potencial productivo de azadiractina (Rajarajan et al., 2025).
Otro aspecto relevante es la estabilidad del compuesto. La azadiractina es altamente susceptible
a procesos de degradación inducidos por factores como la radiación UV, la oxidación y
condiciones ambientales adversas, lo que puede afectar su concentración durante el
procesamiento y almacenamiento (Song et al., 2018). En este contexto, el uso de etanol como
solvente podría haber contribuido a una mejor conservación del compuesto, favoreciendo su
recuperación en comparación con otros métodos de extracción menos selectivos.
En términos aplicados, la concentración obtenida sugiere un alto potencial del extracto como
bioinsumo agrícola. La azadiractina es ampliamente reconocida por su actividad insecticida,
reguladora del crecimiento de insectos y su carácter biodegradable, lo que la convierte en una
alternativa sostenible frente a pesticidas sintéticos (Song et al., 2018).
Esto es especialmente relevante en el contexto actual de agricultura sostenible y reducción del
impacto ambiental. La variabilidad reportada en la literatura, donde los valores de azadiractina,
refuerza la necesidad de estandarizar los procesos de extracción y caracterización. Esta
variabilidad representa un desafío para la producción industrial de biopesticidas basados en
neem (Prakash et al., 2005).
Los resultados evidencian diferencias claras en la dinámica de mortalidad de Spodoptera
frugiperda entre tratamientos, lo cual sugiere un efecto dependiente tanto de la concentración
como de la disponibilidad del compuesto bioactivo. El tratamiento T1 mostró una respuesta
temprana, alcanzando su máxima mortalidad alrededor de las 80 horas, lo que indica una acción
más rápida del extracto. Este comportamiento coincide con estudios que reportan que la
azadiractina puede inducir efectos tóxicos progresivos en larvas, con una mortalidad que
depende del tiempo de exposición y la dosis (Lin et al., 2021).
En contraste, el tratamiento T2 presentó una respuesta retardada, lo cual podría explicarse por
una menor concentración del compuesto o una absorción más lenta. Se ha demostrado que la
azadiractina no siempre produce mortalidad inmediata, sino que actúa como regulador del
crecimiento y antialimentario, prolongando el tiempo hasta la muerte (Acharya et al., 2023).
El tratamiento T3 mostró la menor eficacia y una respuesta tardía, lo que sugiere que
concentraciones bajas pueden inducir efectos subletales antes de causar mortalidad. Estudios
recientes han demostrado que incluso a bajas concentraciones, la azadiractina puede afectar la
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estructura del intestino medio de las larvas, alterando su fisiología y reduciendo su crecimiento
(El-Ansary et al., 2026).
Por otro lado, la ausencia de mortalidad en el tratamiento control (T4) confirma que el efecto
observado en los tratamientos experimentales se debe exclusivamente a la acción del extracto,
descartando factores externos. Este comportamiento es consistente con estudios donde el
control presenta mortalidades mínimas (<10%) en condiciones experimentales similares (Lin
et al., 2021).
Desde una perspectiva fisiológica, la azadiractina actúa principalmente como inhibidor del
crecimiento, interfiriendo en la muda y provocando apoptosis en células del intestino medio,
lo que conduce a la muerte progresiva del insecto (Shu et al., 2021). Este mecanismo explica
por qué la mortalidad observada no es inmediata, sino acumulativa a lo largo del tiempo.
Adicionalmente, la variación en la respuesta entre tratamientos puede atribuirse a diferencias
en la concentración efectiva del compuesto, ya que se ha demostrado que la mortalidad en
Spodoptera frugiperda aumenta significativamente con la concentración de azadiractina,
alcanzando valores superiores al 50% en concentraciones elevadas (Lin et al., 2021).
Los resultados evidencian que el tratamiento T1 presentó la mayor eficacia (66,67%), lo que
indica una mayor concentración del compuesto activo y una respuesta biológica más intensa
sobre Spodoptera frugiperda. Este comportamiento es consistente con estudios que indican que
la azadiractina presenta un efecto dependiente de la dosis, incrementando la mortalidad y
reduciendo la actividad alimentaria de los insectos a mayores concentraciones (Isman, 2020).
El tratamiento T2 mostró una eficacia intermedia (24,47%), lo cual sugiere que
concentraciones moderadas del extracto pueden generar efectos subletales más que letales. Se
ha demostrado que la azadiractina actúa como regulador del crecimiento, afectando procesos
hormonales como la ecdisis y reduciendo el desarrollo larval (Kilani-Morakchi et al., 2021).
Por otro lado, el tratamiento T3 presentó la menor eficacia (11,13%), lo que evidencia que
concentraciones bajas pueden no ser suficientes para inducir mortalidad significativa, aunque
podrían afectar el comportamiento alimentario. Este efecto antialimentario ha sido
ampliamente documentado y constituye uno de los principales mecanismos de acción del neem
(Isman, 2020).
Desde una perspectiva fisiológica, la azadiractina interfiere con el sistema endocrino de los
insectos, inhibiendo la síntesis de hormonas clave y alterando procesos de crecimiento y
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reproducción, lo que explica la reducción progresiva de la eficacia en función de la dosis
(Kilani-Morakchi et al., 2021).
CONCLUSIÓN
El tamizaje fitoquímico preliminar del extracto etanólico de hojas de Azadirachta indica
evidenció la presencia de triterpenos/esteroles, alcaloides, flavonoides y compuestos fenólicos
y taninos. En contraste, las pruebas para saponinas, azúcares reductores y aminoácidos
resultaron negativas. Estos hallazgos muestran que el extracto contiene diversos grupos de
metabolitos secundarios, aunque su identificación individual requiere técnicas analíticas
específicas.
La actividad insecticida del extracto varió según la concentración evaluada. El tratamiento de
mayor concentración (75 %) presentó la mayor mortalidad larvaria, con un 66,67 % a las 80
horas, mientras que las concentraciones del 50 % y 25 % alcanzaron mortalidades de 24,47 %
y 11,13 %, respectivamente. Estos resultados indican una mayor respuesta insecticida a la
concentración más elevada dentro de las condiciones experimentales evaluadas.
La mortalidad observada durante el periodo experimental mostró diferencias en su evolución
temporal entre los tratamientos, con una respuesta más temprana en el tratamiento de mayor
concentración y efectos más tardíos en los tratamientos de menor concentración. Este
comportamiento respalda el interés de continuar evaluando la relación entre concentración del
extracto y respuesta larvaria mediante bioensayos con mayor número de individuos y análisis
estadísticos que permitan establecer la significancia de las diferencias.
En conjunto, los resultados respaldan el potencial del extracto etanólico de hojas de A. indica
como una alternativa botánica complementaria para el manejo de S. frugiperda. Sin embargo,
antes de recomendar su aplicación agrícola, es necesario validar su eficacia en condiciones de
campo, evaluar posibles efectos sobre organismos no objetivo y estandarizar su composición
química y preparación.
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: https://doi.org/10.65011/prismaods.v5.i6.414
Cómo citar este artículo (APA 7ª edición):
Gavin Moyano, C., Moran Sánchez, N., Bermeo Pesantes, F., Jama Aveiga, E., & Choez
Chavez, D. (2026). Eficacia del extracto etanólico de Azadirachta en el control de Spodoptera
frugiperda en estadio larvario. Prisma ODS: Revista Multidisciplinaria Sobre Desarrollo
Sostenible, 5(6), 84-104. https://doi.org/10.65011/prismaods.v5.i6.414
